一、概述
Magarose®️是厦门美博泰生物独家注册的琼脂糖磁性微球商标，内含顺磁性纳米颗粒的琼脂糖（6％）交联而成，粒径10~30 μm，保证了高比表面积、易悬浮、快速磁分离等特性，显著加速操作和实验的重现性。
NHS 活化的琼脂糖磁珠（Magarose-NHS）将蛋白质简单有效地共价固定到磁珠载体上，为抗体、抗原或其他生物分子的亲和纯化提供了有价值的方法。活化的琼脂糖磁珠含有能够与蛋白质或其他分子上的伯胺反应形成稳定的酰胺键的 N-羟基琥珀酰亚胺（NHS）官能团。耦合反应在 pH 7~9 的无胺缓冲液中进行。不管配体的分子量或等电点（PI）耦合反应的效率均大于 80%。一旦配体被固定，所制备的琼脂糖磁珠即可用于多重亲和纯化程序中。
图1. NHS活化的琼脂糖磁珠用于固定含胺分子
二、产品特性
产品名称
Magarose-NHS
货号
PMAG017
磁珠浓度
25% (v/v) in 100% 异丙醇
配基密度
~ 50 μmol / ml磁珠
介质
6%交联磁性琼脂糖
粒径
10 ~ 30 μm
配体结合
>20 mg IgG/ml磁珠
保存
常温运输，2~8℃保存一年
注：磁珠蛋白结合量与目标蛋白特性相关，此处仅作参考值。
三、使用方法
1. 缓冲液
所有的水和缓冲液均用 0.22 μm 或 0.45 μm 的滤膜进行过滤。
① Washing Buffer A: 1 mM 盐酸，使用前冷却到 4ºC;
② Coupling Buffer A: 100 mM 2-吗啉乙磺酸 MES，pH 4.8（用于等电点小于 7 的生物分子的偶联）;
③ Coupling Buffer B: 200 mM NaHCO3， pH 8.3（用于等电点大于 7 的生物分子的偶联）;
④ Blocking Buffer: 3 M 乙醇胺，pH 9.0;
⑤ Storage Buffer: 含质量分数为 0.05%叠氮化钠的 PBS 缓冲液或根据客户需求采用其他缓冲液。
2. 流程关键点
1) 其中磁珠洗涤要严格按照说明书采用冷却的 Washing Buffer A（①）快速洗涤 ，以防磁珠在洗涤过程中 NHS 基团水解；
2) 蛋白偶联过程中，首先要通过实验确定合适的 Coupling Buffer（主要包括 Coupling Buffer A（②）、Coupling Buffer B（③）、50 mM 硼酸溶液pH 8.5、100mM磷酸缓冲液，100mM NaCl，pH7.4这四种）；
3) 确定合适的Coupling Buffer后，再以此Coupling Buffer 为基础，确定合适的偶联蛋白浓度，因为蛋白浓度越高，偶联到磁珠上的蛋白的量会越大（这是由于 NHS 基团跟蛋白偶联和 NHS 基团本身水解是一对竞争反应）。当然此处要综合考虑使用性能和成本，有些客户偶联少量蛋白便可满足使用需求，这时采用低浓度的蛋白便可，这样可降低成本。
4) 封闭这一步可以采用3 M 乙醇胺，也可使用 Tris 缓冲液（100 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH 8.0），封闭时间不得低于 2 h，如果化学封闭后背景仍然很高，还可以额外加一步 BSA 封闭。
3. 蛋白偶联操作步骤
以下操作以取磁珠样品 400 μL，采用 1.5 mL EP 管为例介绍。用户可根据自身需求按比例调整。
蛋白溶液配制：取适量待偶联蛋白用 Coupling Buffer 溶解，配成浓度为≥3.0 mg/mL 的蛋白溶液。已经保存于 buffer中的蛋白，需要通过透析或者脱盐的方法彻底除去原有 buffer 里含伯胺基的物质，然后再用 Coupling Buffer 配成浓度为≥3.0 mg/mL 的蛋白溶液，将配制好的蛋白溶液于4℃保存备用。
注： (1)为达到更好的性能，蛋白浓度≥3.0 mg/mL，这样偶联效率会更高，此处需综合考虑成本和使用要求； (2)蛋白溶液中不能含有带伯氨基的成分，比如 Tris，甘氨酸，明胶，BSA 等；
1) 取 400 μL 25%磁珠悬浮液于 1.5 mL EP 管中。磁分离，去除上清液。
注：磁珠取样前要反复颠倒、使用涡旋振荡器使其混合均匀，以保证实验的同一性，每取一次样需要重新混匀。
2) 加 1 mL 2~8℃的 Washing Buffer A（①）于离心管中，涡旋 15 s，使磁珠混合均匀。将 EP 管置于磁性分离架内，富集磁珠，去除上清液。
3) 加 200 μL 蛋白溶液于 EP 管中，涡旋 30 s，使其混合均匀。
注：磁珠洗涤后要立即加入蛋白溶液。
4) 将 EP 管涡旋 15 s，置于垂直混合仪上，室温混合 2~4 h。如果垂直混合不均匀，则反应前 30 min，每隔5 min 取下 EP 管涡旋 15 s。此后，每隔 15 min，取下 EP 管涡旋 15 s。
注：如有需要可以在 4ºC 反应过夜。
5) 采用磁性分离架富集磁珠，保存上清。加 1 mL Blocking Buffer（④）于 EP 管中，涡旋 30 s，将 EP 管置于磁性分离架内，富集磁珠，弃上清液。
注：Blocking Buffer（④）除了试剂盒中提供的 3 M 乙醇胺外，也可以使用 100 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH 8.0 等其它封端试剂。
6) 加 1 mL Blocking Buffer（④）于 EP 管中，涡旋 30 s，将 EP 管置垂直混合仪中室温反应2 h。将 EP 管置于磁性分离架内，富集磁珠，弃上清液。
7) 加 1 mL 超纯水于 EP 管中，充分混合，用磁力架富集磁珠，弃上清液。
8) 加 1 mL Storage Buffer（⑤）（比如含 0.05%叠氮化钠的 PBS 缓冲液，或者客户根据自己实际需求选合适的保存溶液 ）于 EP 管中，充分混合，用磁力架富集磁珠，弃上清液。重复该操作 2 次。
9) 加入 400 μL Storage Buffer（⑤）于 EP 管中，充分混合，4ºC 保存备用。
注：最终偶联蛋白的磁珠浓度为 25% (v/v)。
4. 注意事项
1) 磁珠对水分敏感。为了保证产品质量，在取样之后需立即盖上瓶盖，并用封口膜密封，于4℃保存。
2) 禁止将磁珠干燥或冷冻。干燥和冷冻操作可能导致磁珠的聚集从而丧失结合活性。
3) 可通过间接法测定反应前后蛋白含量，或通过直接法检测偶联到磁珠表面的蛋白含量，使用280 nm 附近的波长来测定蛋白含量是不可取的，因为 NHS 基团在 280 nm 波长附近有很强的吸收，会严重干扰检测结果。蛋白稳定剂（如 BSA，gelatin）会抑制抗体与磁珠的结合，因此在磁珠偶联抗体过程中，需要确保抗体保存体系中不存在含伯氨基的蛋白稳定剂。
4) 缓冲液中含有带伯胺的物质会抑制蛋白质偶联到磁珠表面，去除伯胺物质可采用透析和脱盐的方法。
5) NHS 基团易水解，故在用 Washing Buffer A 洗涤时，一定要参照说明书进行。
6) 蛋白溶液要预先配制好，Washing Buffer A 洗涤完毕后，要立即加入蛋白溶液进行偶联反应。
蛋白质和磁珠的偶联效率因蛋白质种类和性质差异而不同。一般而言，蛋白质浓度为≥3.0 mg/mL时利于蛋白质偶联；然而，对于不同的蛋白其浓度需要优化。
参考文献：
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3. Nazri, Muhammad Najmi Mohd, et al. "Pd-L1 DNA aptamers isolated from agarose-bead selex." Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters 112 (2024): 129943.
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5. Zheng, Mengyao, et al. "FAM tag size separation-based capture-systematic evolution of ligands by exponential enrichment for sterigmatocystin-binding aptamers with high specificity." Analytical Chemistry 96.2 (2024): 710-720.
6. Lian, Qi, et al. "The molecular basis of venom resistance in the non-venomous snake Sinonatrix annularis." Journal of Chromatography B 1195 (2022): 123182.
本产品仅供科研用途！
